文章来源：Super Lab、IVD原料网
引物设计的下列原则供您参考：
1) 引物最好在模板cDNA的保守区内设计。
2) 引物长度一般在15-30碱基之间。
3) 引物GC含量在40%-60%之间，Tm值最好接近72℃。
4) 引物3′端要避开密码子的第3位。
5) 引物3′端不能选择A，最好选择T。
6) 碱基要随机分布。
7) 引物自身及引物之间不应存在互补序列。
8) 引物5′端和中间△G值应该相对较高，而3′端△G值较低。
9) 引物的5′端可以修饰，而3′端不可修饰。
10) 扩增产物的单链不能形成二级结构。
11) 引物应具有特异性。
常用的软件有Oligo 6和Primer Premier 5.0。引物设计软件是根据引物设计的指导意见设计而成。其实，PCR扩增的成败最关键的是反应模板的制备和反应条件的控制。引物设计软件的缺点是，有时判断为该基因没有一段区域满足标准引物的要求。
金斯瑞为您提供以下引物设计相关软件：
引物计算工具
引物设计工具
测序引物设计软件
Real-time PCR 引物设计软件
通常国外的文献可信度比较高，可直接使用；但为了保险起见，最好用blast对引物探针的序列进行必要的验证；或者再进一步用引物设计软件对引物探针的二级结构和退火温度进行分析，这样更有利于您对整个实验的把握。
Tm值的概念：
DNA熔解温度，指把DNA的双螺旋结构降解一半时的温度，亦即DNA 变性过程中，紫外吸收值达到最大值的50%时的温度称为 DNA 的解链温度(Tm)。
金斯瑞采用以下方法计算Tm值：
长度为20mer及以下的引物，Tm计算公式为：Tm = 4℃(G + C)+ 2℃(A + T)。但这个公式只适用于14~20个碱基的引物，引物的TM值还与引物长度、碱基组成、引物使用缓冲溶液的离子强度等有关。
对于更长的寡聚核苷酸，Tm计算公式为：Tm = 0.41(% of GC) – 675/L + 81.5
注：L：引物碱基数；% of GC：引物GC含量；% of GC = GC个数/引物总碱基数
主要因为是修饰单体稳定性较差，偶联时间长，效率低，最后得到的产量自然低于一般的引物。修饰引物通常需要PAGE或HPLC纯化，纯化过程损失大。修饰引物使用的原料是一般引物原料的几百倍，所以产品的价格自然高。
荧光探针保存方法如下：
1) 荧光探针必须避光保存。
2) 干品可于-80℃保存一年以上,如无条件，请于-20℃保存。
3) 强烈建议用RNase-free的TE (pH8.0) buffer溶解探针，这样得到的探针溶液更稳定，保存时间更长。通常，将探针配制成100pmol/μl的储备液，分装成几份 (每份最多反复冻融5次)，于-20℃保存。使用前，将配制好的储备液稀释成工作液 (10pmol/μl或20pmol/μl)，剩余部分于-20℃保存。
荧光染料参数
5-FAM、6-FAM、FITC标记都是荧光素标记 (Fluorescein)，5-FAM与6-FAM互为异构体。它们的发色团均为荧光素，通常使用中没有区别。
FAM通过酰胺键与Oligo连接，而FITC通过硫脲键与Oligo 连接，FITC上的 -SCN 与-NH2反应过程如下：
下图是3'FITC和3'FAM与引物连接后的效果图，5'FAM和5'FITC的连接方式与此相同。
由淬灭基团TAMRA、Eclipse或BHQ系列染料组成的双标记荧光探针常常被用作水解探针(Hydrolysis Probes)，或称TaqMan探针，用于实时荧光定量PCR实验。
1) TAMRA为荧光染料，在淬灭报告基团的同时，会在更高波长处发射荧光。而Eclipse及BHQ系列为非荧光染料，淬灭报告基团时，自身不发射荧光，探针荧光本底比TAMRA低，检测灵敏度更高。
2) TAMRA的吸收光谱覆盖范围窄，可与之匹配的报告基团种类比较少；而Eclipse则具有更宽的吸收范围(390nm-625nm)，可淬灭的报告基团种类很多，如FAM、HEX、TAMRA、ROX等均可；组合使用的BHQ系列染料的吸收光谱覆盖范围则更广，从430nm一直到近红外，可淬灭的报告基团种类更多，包括Cy3、Cy5等。因此可由Eclipse或BHQ系列染料组成一套双标记荧光探针用于多重PCR。
下列原则可供您参考：
1) TaqMan 探针位置尽可能靠近扩增引物（扩增产物50-150bp），但不能与引物重叠。 2) 长度一般为18-40mer 。 3) G-C含量控制在40-80%左右。 4) 避免连续相同碱基的出现，特别是要避免GGGG或更多G出现。 5) 在引物的5'端避免使用G。 6) 选用比较多的碱基C。 7) 退火温度Tm控制在 68-70℃左右。
有些荧光基团在260nm处也有吸收光，例如 FAM, HEX, TAMRA, TET。其它在260nm处可能也有吸收值，但是数据没有公布，因此计算时不包括在里面。
5'磷酸化作用是通过B-氰乙基化学反应添加到引物5'端的糖环上，而不是最后一个碱基上；3'磷酸盐被连接到固体支持介质上，所以在合成的第一个循环，碱基就与它偶联。3'磷酸化修饰具有阻止聚合酶延伸的功能。
S-oligos是寡核苷酸中的单核苷酸之间的磷酸二酯键中的一个氧被硫代替后形成的。这种修饰是在连接的时候进行的（不是在合成后进行的）。碱基被添加上后，再进行连接修饰。在两个碱基之间的磷酸可以转换成双键"S"(用硫代试剂）代替普通的双键"O"（用碘溶液），和磷酸二酯键相连的碱基都可以进行这种修饰。
但3'末端碱基不能进行硫代磷酸化修饰，因为从固体支持物上解离下来时，磷酸酯键不存在了，3'末端碱基是OH。我们可以提供对S-oligo进行5'修饰，如客户可以定制S-oligo的荧光素标记。S-oligo和普通的寡核苷酸在PAGE胶上的位置是一样的。
5'Aminolinker(C6)是在合成循环的最后一步以亚磷酸胺的形式通过B-氰乙基化学反应添加到引物5'糖环上的，而不是添加到最后一个碱基上。
5'氨基标准的偶联效率是>95%,氨基基团在260nm处是没有吸光值的；它在210nm处有吸光值。不能通过电泳检测它的存在（琼脂糖或丙烯酰胺）。
3'Aminolinker(C7)只与一些5'修饰兼容，如FAM, HEX, TET, Fluorescein, Biotin, Amine, and phosphate。其它的5'修饰(如Alexa dyes)需要氨基才能与寡核苷酸相连，这就无法避免该染料与3'氨基相连。
氨基修饰是很简单便宜的方法。任意一种氨基修饰都可以。5'末端C6类型效果很好。
在液体中的颜色：HEX是粉红色，FAM是黄色，TET是橙色FAM, HEX and TET是在合成循环结束时以亚磷酸胺的形式通过B-氰乙基化学作用添加上的，因此是添加到引物的5'末端的糖上而非引物的末端碱基。它们通过磷酸二酯键共价连接到5'端最末的糖环上。
经过这些修饰的寡核苷酸不能进行硫代磷酸化修饰。
注：摩尔消光系数是在最大nm处的激发光下测得的。因为pH或成分的微小变化可能会影响以上的数据。
